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- tRNA修饰测序(tRAM-Seq)
- 单碱基D修饰测序(CRACI-Seq)
- cfRNA多修饰测序(LIME-Seq)
- 单碱基m6A 修饰测序(GLORI-Seq)
- 单碱基m5C 修饰测序(Bis-Seq)
- 单碱基m1A 修饰测序(m1A-MAP-Seq)
- 单碱基m7G 修饰测序(Alkaniline-Seq)
- 单碱基m7G修饰tRNA测序(TRAC-Seq)
- 单碱基ac4C 修饰测序(Reda C:T-Seq)
- 单碱基O8G 修饰测序(O8G miSeq)
- 2-溴丙烯酰胺辅助环化测序(BACS-Seq)
- 单碱基假尿嘧啶修饰测序(BID-Seq)
- 2'-O-甲基化修饰测序(NM-Seq)
- 小RNA 2'-O-RiboMeth-Seq
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tRNA修饰测序(tRAM-Seq)技术
tRNA是细胞内修饰种类最丰富、修饰密度最高的RNA分子。其中,大量甲基化修饰(m1A、m3C、m1G、m2,2G等)位于碱基的沃森-克里克配对面(Watson-Crick face,WC face),会直接破坏正常碱基互补配对,干扰逆转录延伸,产生特征性测序错配信号。这类修饰是调控tRNA结构稳定、密码子识别、翻译效率的关键分子开关,广泛参与胚胎发育、细胞分化、肿瘤发生、微生物稳态等生物学过程。
云序生物推出tRNA修饰测序(tRNA abundance and modification sequencing,tRAM-seq)产品,同步检测tRNA表达与多种甲基化修饰(m1A、m3C、m1G、m2,2G)。tRAM-seq采用双文库测序策略:
处理组文库:tRNA经AlkB去甲基酶处理,去除m1A、m3C、m1G和m2,2G等甲基化修饰;
未处理组文库:tRNA不经去甲基酶处理,保留天然修饰状态。
通过比较两组文库在同一tRNA位点的错配率(Misincorporation rate)、逆转录终止率(RT stop fraction)差异,即可鉴定修饰位点并定量其修饰水平。
技术原理
tRNA修饰测序(tRAM-seq)利用位于沃森-克里克配对面的甲基化修饰会破坏碱基正常配对能力、在逆转录过程中诱导逆转录酶产生特征性错配突变、延伸终止的特性,通过高通量测序检测这些特征信号,即可精确推断修饰位点及其修饰水平。该技术主要流程如下:
1.总RNA提取与tRNA富集:用TRIzol法提取完整总RNA,分离并回收tRNA。
2.tRNA分组预处理:将富集的tRNA样品分为两份,一份不经任何处理,用于检测修饰依赖的错配、终止信号;另一份加入AlkB酶孵育完成去甲基处理,用于扣除测序背景偏差。
3.tRNA末端修复:对tRNA进行末端修复,去除干扰基团,为后续接头连接做准备。
4.接头连接:在tRNA的3'末端连接接头,经凝胶电泳纯化获得连接产物。
5.逆转录:使用高持续延伸能力的逆转录酶进行逆转录,保留修饰诱导的特征碱基错配信号。
6.文库构建与高通量测序:将cDNA环化并构建测序文库,利用高通量测序技术进行分析,输出tRNA修饰图谱与表达定量信息。
tRNA修饰测序流程图
云序优势:
1.同步检测多种修饰: tRNA修饰测序(tRAM-seq)可在单次实验中同时完成m1A、m3C、m1G、m2,2G等WC face甲基化修饰的位点鉴定和水平定量,大幅提升研究效率。
2.单碱基分辨率,精准定位: 通过处理组与未处理组文库的比对,tRAM-seq可在单碱基水平上定位修饰位点,为深入研究特定修饰的功能提供精准坐标。
3.同步解析tRNA表达与修饰: AlkB酶处理组可有效消除修饰带来的测序偏差,实现tRNA丰度精准定量;结合未处理组文库修饰信号,一次性获取tRNA表达图谱与修饰图谱。
4.优化的实验流程: 云序生物tRNA修饰测序(tRAM-seq)采用优化的实验流程,显著提升了修饰tRNA的cDNA合成效率与建库成功率,从源头保障数据的可靠性与覆盖度。
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高分文章案例
案例一:斑马鱼胚胎发育过程中tRNA表达与修饰图谱及其动态变化
原文:tRNA expression and modification landscapes, and their dynamics during zebrafish embryo development
发表时间:2024/7/11
发表期刊:Nucleic Acids Research
影响因子:15.0
发表单位:Medical University of Vienna
在细菌、古菌和真核生物的基因组中,tRNA基因均以多拷贝形式存在。除不同拷贝间的序列差异外,广泛的转录后修饰进一步丰富了tRNA的多样性。尽管tRNA作为蛋白质翻译中适配分子的核心作用早已被充分证实,但所有tRNA拷贝是否均被实际表达,以及同工受体间的差异是否具有调控功能,这些问题直到近年才逐渐得到揭示。该研究基于新一代测序(NGS)技术在RNA修饰检测方面的最新进展,开发了tRAM-seq方法,用于研究tRNA的表达及其修饰特征。利用该方法,该研究对模式脊椎动物斑马鱼胚胎发育过程中细胞核、细胞质及线粒体tRNA进行了全面分析。结果显示,发育进程中tRNA的种类组成发生动态变化,原肠胚起始阶段会出现一次显著的同工受体tRNA表达量与修饰谱全局性转换。综合这些发现,该研究指出,表达tRNA库可能存在全局性的重编程,这种重编程可能促使蛋白质翻译装置适应胚胎发育这一精细而关键过程的不同阶段。
图1. 四细胞期斑马鱼胚胎的tRNA修饰图谱
案例二:基于高通量tRNA测序与修饰分析的微生物组表征
原文:Microbiome characterization by high-throughput transfer RNA sequencing and modification analysis
发表时间:2018/12/17
发表期刊:Nature Communications
影响因子:18.1
发表单位:University of Chicago
高通量测序技术的发展极大推动了天然微生物群落多样性与功能机制的相关研究,但现有测序手段难以解析微生物群落内与蛋白质翻译动态过程相关的生理状态。tRNA是蛋白质翻译体系的核心组分,广泛存在于各类活细胞中,且具备系统发育溯源特性,是解析环境微生物生理特征的理想研究靶点。该研究利用tRNA修饰测序技术对小鼠盲肠样本开展分析,该方法区分高脂饲喂与低脂饲喂小鼠菌群的效果与16S rRNA基因扩增子测序相当,同时还鉴定出具有物种特异性、受饮食调控的tRNA修饰差异。上述结果可在物种分辨率层面,原位解析复杂环境微生物组内tRNA基因表达与转录后修饰的动态变化规律。
图2. tRNA位点的突变比例热图
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数据分析(仅供展示 详见demo报告)
一、分析内容
1.原始数据整理,Q30质控
2.去接头处理和序列统计
3.序列匹配与数据统计
4.tRNA的识别与注释
5.差异表达tRNA的识别与注释
6.差异表达tRNA聚类热图(Cluster)
7.tRNA散点图(Scatter)
8.tRNA火山图(Volcano)
9.tRNA修饰位点识别与注释
10.tRNA差异修饰位点识别与注释
11.tRNA逆转录错配率分布热图(Heatmap)
12.tRNA差异修饰位点聚类热图(Cluster)
13.tRNA修饰位点火山图(Volcano)
二、部分数据分析结果示例
1.差异表达tRNA的识别与注释
云序生物对tRNA进行差异表达分析,计算tRNA在不同样品组间的表达倍数变化(FC, Fold Change)和P值。
2.差异表达tRNA聚类分析
聚类图可以用于衡量样本或tRNA之间表达的相似性,通常来讲,同组的样品能够聚在一个分支中。
3.tRNA散点图
散点图根据差异tRNA倍数变化直观的展示各个分组差异tRNA分布情况。
4.tRNA修饰位点识别与注释
由于tRNA修饰碱基在逆转录过程中会引发碱基错配、延伸终止,因此通过解析逆转录错配信号与终止信号可以实现修饰位点的定位与修饰类型判定。
5.tRNA逆转录错配率分布热图
展示各样本isodecoder不同位点的逆转录错配率全局分布,直观呈现修饰位点的位置与强度特征。
6.tRNA差异修饰位点识别与注释
云序生物根据修饰信号占比,计算组间的差异修饰比例变化(FC, Fold Change)和P值。
7.tRNA差异修饰位点聚类分析
通过绘制聚类图,可视化差异修饰位点在组间的相似性与差异性。
8.tRNA修饰位点火山图
火山图用于展示tRNA差异修饰位点的变化倍数和差异的显著程度。(注:需要各处理样本重复数量三个以上才可以绘制火山图)。
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样本要求:
样品类型:
细胞、组织、总RNA、全血
样品量:
a)细胞:≥4×10^6
b)组织:≥100mg
c)总RNA:≥4 µg
d)全血:≥4 ml(推荐用EDTA 抗凝采血管,不可用肝素抗凝管)
样品的运输与保存:
样品运输:样品置于1.5 mL管或冻存管中,封口膜封好,干冰运输。
样品保存:将采集好的样品单独分装至冻存管中,放入-80℃冰箱短期保存,如需长期保存,请放入液氮。
技术服务
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云序生物是国家高新技术企业及ISO9001认证单位,以RNA修饰组、表观遗传组与时空组学为特色,依托高通量测序平台,以“技术创新+全链条服务”为核心,通过专利技术应用(如GLORI)、临床微量样本技术优化及单细胞-空间多组学整合能力,持续推动表观遗传与转录组学发展。
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